Prélèvements biologiques

Objectif

Réaliser des prélèvements veineux dans le bon ordre et dans les bonnes conditions pour obtenir des résultats fiables.

Ordre de remplissage des tubes (OBLIGATOIRE)

Ordre Couleur Anticoagulant Analyses principales
1 - Hémocultures Flacons aérobie + anaérobie Aucun Bactériologie
2 - Bleu Citrate de sodium Anticoagulant TP, TCA, INR, fibrinogène
3 - Rouge/Jaune Aucun (gel activateur) Aucun Biochimie, sérologies, troponine
4 - Violet EDTA Anticoagulant NFS, plaquettes, réticulocytes
5 - Gris Fluorure de sodium Anticoagulant Glycémie veineuse
Mnémotechnique : "Bien Suivre Votre Globe"

Bleu - Sec - Violet - Gris

Correspondance clinique des tubes

Tube Analyses cliniques Pathologies concernées
Rouge (sec) Troponine, CRP, bilan rénal, ionogramme IDM, Sepsis, IRA
Bleu (citrate) TCA, TP, INR Anticoagulants (Héparine, AVK)
Violet (EDTA) NFS, plaquettes, CRP Infections, anémie, TIH
Gris Glycémie Diabète

Hémocultures - Règles strictes

Hémocultures - Conditions impératives

  • 2 paires (1 flacon aérobie + 1 flacon anaérobie) = 4 flacons au total
  • Prélever AVANT le début des antibiotiques (les antibiotiques tuent les bactéries in vitro)
  • Désinfection cutanée rigoureuse (chlorhexidine alcoolique) + temps de séchage
  • Volume : 10 mL par flacon chez l'adulte
  • Délai entre prélèvement et mise en incubateur : < 30 min
  • Prélever dans 2 sites différents si possible

Gazométrie artérielle (GDS)

Matériel : seringue héparinée spéciale GDS + bouchon étanche + glace si délai prévu

  1. Tester l'artère radiale (test d'Allen : comprimer radiale + cubitale → relâcher cubitale → recoloration normale < 7 sec)
  2. Ponctionner l'artère radiale à 45° (pulsatile = artériel)
  3. Remplir la seringue sans air (retirer les bulles)
  4. Boucher hermétiquement + étiqueter
  5. Transporter immédiatement ou sur glace si délai > 15 min

Analyses : pH (normal 7,38-7,42), PaO2 (80-100 mmHg), PaCO2 (35-45 mmHg), HCO3- (22-26 mEq/L), lactate (< 2 mmol/L)


Sepsis · IDM · Héparine · Pose VVP